Q:使用贵司的***试剂盒或技术服务有发表过文章吗？是否可以提供参考？
A:有，请您参考网页顶部“案例展示”部分，其中不乏客户发表的高分文章，谢谢！
Q:贵公司RNA pulldown试剂盒是否包含探针呢？
A:
不包含；转录调控及转录后调控系列试剂盒均不包含探针。
Q:对于难转染的细胞，应该如何提高其转染效率？转染效率又该如何确定？
A:1)对于贴壁细胞，采用转染试剂转染即可；
2)对于比较难转染的细胞，为提高转染效率，可选购特殊要求的转染试剂或者使用电转的方法，
但是由于电转的方法对细胞损伤比较大，该方法未必是最佳的；
转染效率的确定，常用的是使用荧光标记的siRNA，通过荧光显微镜，共聚焦显微镜，流式细胞
仪检测等方法，但最终以达到基因过表达或者干扰的效率为准。
Q:基因为什么要强调mRNA水平检测？可以直接检测蛋白和功能吗？
A:常规的基因检测需要做到mRNA水平和蛋白水平同时说明，对于RNAi实验，由于siRNA直接作
用于mRNA，因此mRNA水平检测是最直接在指标。
一般认为，mRNA的降解直接的结果应该是对应蛋白质含量的下降，所以在蛋白水平的检测结果
也应该可以作为有效性的检测指标。实际情况往往出现mRNA下降水平与蛋白下降水平不对应的现象。
可能原因有：1)检测时间：存在mRNA的下降尚未反映在蛋白量的变化上或者未达到足以检测的可能，一般建
议蛋白和功能检测时间做调整退后。
2)蛋白在细胞中的表达情况：mRNA的翻译过程非常复杂，细胞内基因的表达总要维持一个平衡，
某些蛋白表达量到一定的程度之后，足以维持其细胞功能，将可能暂时“关闭”表达的功能，转
录出来的部分mRNA可能不参与蛋白翻译的过程，因此，mRNA水平的下调与蛋白水平下调并非
完全成正相关的关系。
3)另外还可能会涉及到更加复杂的机制。
Q:RNAi中转染时该如何分组？分组的目的是什么？
A:A组（必需） 针对目的基因siRNA knockdown目的基因的表达
B组（必需） 阴性对照siRNA 用非特异的siRNA序列证明RNAi作用的序列特异性
C组（必需） 转染试剂对照 排除转染试剂对细胞的毒性或对目的基因表达的影响
D组（必需） 空白对照 用于检测实验过程中细胞的生长状态
E组（可选） 阳性对照siRNA 用于排除实验体系和实验操作的问题
F组（可选） 荧光对照siRNA 用于转染效率判断，当不明确细胞转染效率时，这一组为必需。
Q:RNAi效率多高才是好的靶点？
A:没有明确的界定，干扰效率高低因不同的细胞类型和不同的基因而异。不同细胞类型的转染效率
也不尽相同，不同基因的表达水平也相差较大，主要看干扰效果而定。
Q:基因沉默/过表达效果不理想，应该如何处理？
A:最常见的影响沉默效果的两个原因是：转染效率低和siRNA序列设计的效果不理想。如果您初次
使用siRNA或采用了新的细胞系，并发现沉默效果不佳，我们建议您对转染效率进行检测，并选择
优化转染条件。如果您已经对实验转染条件进行优化但是问题依然存在，我们建议您换用另一种转
染试剂或是采用其他技术，这也许能提高转染效率。如果已经提高了转染效率但是沉默效果仍然未
达到要求，可能是因为siRNA序列设计的效果不理想。
